巢式pcr的内参引物

来源:学生作业帮助网 编辑:作业帮 时间:2024/05/16 17:33:53
pcr引物的作用

同楼上,当初我问老师这个问题时,他说大学才学这么深

PCR扩增 正向引物,反向引物是什么?怎么结合的?

正反向引物就是一个引物是从3端开始,另一个是从5端开始的.看分子生物学的书吧,里面有详细介绍DNA复制的啊,就是那些理论而已.解释的太简单了,我做过pcr扩增的实验,不懂得可以问我,我尽量回答.

半定量rt pcr内参和目的基因的引物加的量相同吗,能否放在同一管中跑PCR

引物加的量应该相同,能放在一管里跑最好,但是分开跑也可以接收(一般都是这样)

做RT-PCR时,上下引物退火温度一定要一样吗?内参条带很亮,为什么没有目的基因?

上下引物的Tm最好相似,不能差异太大,不然不好设计退火温度;内参条带很亮,说明RT应该没多大问题,问题可能出现在PCR上.没有目的基因是因为1该基因确实不表达;2你的引物不特意,到NCBI的Prime

pcr引物设计时引物位置的选择

不好意思,我没设计过引物,不过建议你到生物秀或是小木虫的论坛去看看,那里有很多这样的问题的

求助水稻的actin 内参基因引物

在这个专利文件里面有全长,引物你自己设计吧

pcr引物的设计有哪些要求

引物的设计一般要考虑以下几个问题:1.长度,至少要16bp,通常为18-30bp2.解链温度(Tm值)3.避免引物内部或引物之间存在互补序列(3个碱基),从而减少引物二聚体的形成以及引物内部二级结构的

pcr中引物的作用

一般PCR使用两条引物,前后各一条,与模版DNA结合上后,前后的引物形成复制起始位点,共同向中间扩增,直到连上,一次扩增完成.

real-time PCR中内参基因的CT值

这个要看你在做PCR前的加样量是否一致.如果加样量是一致的,而内参做出来差别大(比如3-4个CT值)那说明你的实验体系有严重的问题.理论上加入的DNA量一样多,内参的CT值应该都一样.如果你能肯定加样

做荧光定量PCR,但是不知道内参的序列,如果NCBI上没有该怎么设计内参的引物呢?

啥都没有的话是无法设计的首先你可以克隆获得内参的序列,再进行下一步实验再问:如果是想用18srRNA这个内参,我该怎么设计引物来得到这段序列呢?再答:这个在各个物种中的同源性很高的,你可以直接用其他物

RT-PCR中内参蛋白GAPDH和b-actin人和小鼠的可以用同一对引物吗?

要回答这个问题必须看你引物的序列.你贴出来我帮你查一下,你自己也可以BLAST一下.如果在人和鼠的基因中都可以BLAST到,则可以用,否则就不可以.虽然这些HouseKeeper基因的同源性很高,如果

实时定量pcr内参以及相对标准曲线的问题

这个就是SYBRGREEN的局限了.你要做内参话,必须在不同的管子里面另外在同时做.就像楼下说的那样.这样的话,不同管子见的加样误差就会干扰实验数据.内参的目的就是来对照加样误差的.实际上,真正的内参

做实时定量PCR内参引物一般是扩增出来多大片段?

这是由你设计的引物决定,一般控制在200bp以下为佳.包括你要检测的目的基因,设计的片段长度也控制在200bp以内.保证扩增效率较为一致.

qRT-PCR检测植物miRNA的表达量,内参基因选择什么最好?可以给出特意反转录引物和qRT-PCR的引物吗?

我知道和使用过的U6内参基因只有两个:RNU6-1和RNU6-2.前一个就是常见的u6,后一个有时被称为u6b.在我的大鼠RNA样本当中,u6表达量有些太高,u6b的Cq值与我的目标miRNA比较接近

PCR的引物怎样设计,

PCR引物设计的目的是为了找到一对合适的核苷酸片段,使其能有效地扩增模板DNA序列.因此,引物的优劣直接关系到PCR的特异性与成功与否.要设计引物首先要找到DNA序列的保守区.同时应预测将要扩增的片段

哪位有猪的β-actin的PCR内参引物序列啊

`````````````````````分给我吧,别浪费了

反转录RT-PCR的内参如何选择?

RT-PCR就是将RNA先反转录为cDNA,在将转录得到的cDNA作为模板进行PCR反应扩增目标片段.用于反转录的引物根据实验的具体情况选择随机引物、OligodT及基因特异引物的一种.对于短的不具有

什么是PCR引物的特异性

就是指引物与该匹配的目标模板以很高程度匹配(一般是100%),衡量值是detaG的绝对值在适度的范围较高.而此引物在基因组其他位置没有配率很高的地方,衡量水平是detaG的绝对值越小越好.这样设计出来

rt pcr的引物设计

跟一般的PCR一样哇,PrimerPremier、Oligo都可以哦.

pcr与引物的关系

pcr与引物的关系,pcr需要引物啊,其实引物就是扩增的目的片段两端的碱基互补序列.