盘状电泳上样缓冲液都包括什么

当然不行了,成分都不一样,你认为你跑动东西吗?

加的是6*的loadingbuffer,不是说要加6倍的缓冲液,而是说加5微升的DNA样品,需要加1微升的6*上样缓冲液,这样6*的缓冲液被稀释成1*的了,1*才是缓冲液的工作浓度.不懂的话再追问啊

缓冲液在电泳过程中的一个作用是维持合适的pH.电泳时正极与负极都会发生电解反应,正极发生的是氧化反应（4OH--4e->2H2O+O2),负极发生的是还原反应（4H++4e->2H2),长时间的电泳将

应该是调整pH值的,我们做电泳用冰醋酸也是这个作用,在某个pH值点稳定性达到最佳.

主要是看tris的缓冲范围,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到9.2之间,算是中性和偏碱性.DNA肯定是要带负电荷的,所以电泳的时候才会向正极跑.电泳槽一般都会标明正负极的,只要把电源和电泳槽

能用一样的,不连续体系也可用一样的.本身不连续体系的pH与网孔就是不一样的.聚丙烯酰胺凝胶电泳可分为连续的和不连续的两类,前者指整个电泳系统中所用缓冲液,pH值和凝胶网孔都是相同的,后者是指在电泳系统

楼上的博士啊,人家用的是蛋白上样缓冲液,不是核酸电泳缓冲液.PAGE分离蛋白所用缓冲液一般使用Tris,溴酚蓝以及甘油；也可使用TBE,加入溴酚蓝和甘油.还可加入少量DTT和巯基乙醇.作用主要是标记和

主要是看tris的缓冲范围,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到9.2之间,算是中性和偏碱性.DNA肯定是要带负电荷的,所以电泳的时候才会向正极跑.

一般都是一样的.但是现在很多公司提高的MARKER是不用处理的.详细的情况可以问问生物公司,他们技术支持的建议应该更加可靠.

假如你一天跑一次电泳,可以一周换一次,如果你一周做一次的话,可能就两三次换一下.这个缓冲液用久了,效果会差一些,特别是分辨率等,电泳后的结果不好看.如果用了一两次有沉淀可以过滤一下.如果有条件,电泳完

6%12%,10%

电泳缓冲液是Tris-甘氨酸电泳缓冲液.上样缓冲液是SDS缓冲液,需要加入Tris-Hcl,DTT,SDS,溴酚蓝和甘油.分离胶配制过程中的缓冲液是PH8.8的Tris-Hcl浓缩胶配制过程中的缓冲液

Tris-Gly与TAE、TBE两者的离子强度不同,用来跑DNA可能不行三磷酸腺苷(站内联系TA)补充,你跑native或者EMSA胶一类的,可以用TBE跑蛋白或者蛋白－核酸复合体yaoyl0679(

电泳的物质是什么?核酸一般要求pH=8,这是核酸能稳定溶解的pH值,因为核酸中的磷酸集团带负电,所以在碱性条件下保持解离,才可溶解.

好的,传说中就是如下三个：1.loadingbuffer含有EDTA,就是传说中的螯合剂,螯合镁离子,防止DNA被降解.2.loadingbuffer含有蔗糖（或者甘油或者聚蔗糖,反正就是比重大的东西

我们实验室用的就是博凌科为的,感觉挺不错的,价格也不贵,这是他们的几种规格和相应的价格,货号：EP0101规格：5ml价格：40.00元货号：EP0102规格：10ml价格：65.00元货号：EP01

维持适当的ph作为电介质参与电泳

加样缓冲液中有buffer染料,给核酸染色,指示作用,电泳缓冲液与制胶缓冲液是一样的,是1*TAE或5*TBE.

1,看目的蛋白的大小一般actin以下的可以跑12胶红线左右可以用12或10跑几百的很大的用6的胶小蛋白12的10的一般都能跑如果不考虑效率的话...能跑多慢跑多慢,越慢跑的越好看2,看样品浓度多少,

NO,储藏液一般是母液,用的时候需要相应的稀释.所谓母液就是高浓度的储藏液.浓度低容易变质.电泳储液一般50X,用的时候要稀释到1X,也就是按1ml50X储液+49ml去离子无菌水的比例混匀.