琼脂糖凝胶电泳聚丙烯酰胺凝胶泳毛细管电泳区别

你给的信息的确很少了.楼上2位都分析的很好,不过,我补充说一下露姬雅关于质粒三条带的解释.现在对于3条带的解释是这样的：最前面跑最快的是超螺旋,质粒是超螺旋的,你电泳的时候最亮很正常；中间的是开环质粒

一般根据要分离的蛋白质的分子量来确定,如果分子量不清楚,可以先用7.5%的浓度预试一下.

主要的原因是保持琼脂凝胶和周围的缓冲体系保持相同的pH值,当然这种pH值是前人优化过的,最有利于核酸分离和稳定的pH条件；如果凝胶和缓冲体系的pH存在较大的差异,势必会影响核酸的分离效果.

电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而

不一定要取要取5µl,10µl,15µlDNA,你提取的应该是基因组DNA,主要看条带的位置判断你提取的DNA是否完整,从图上看出,与Marker比较,你提取的基因组DN

RNA跟DNA不一样,主要现象就是降解1.提取过程中RNA出现降解2.洗脱的时候洗掉了3.18S有部分降解4.弥散带说明降解严重,杂质过多5.28S部分降解RNA完美提出来的话应该是三条带：28,18

RNA分子有很多二级结构,需经变性剂处理,而DNA一般不需要变性处理RNA电泳的电泳槽及缓冲液均需要确保无RNAase,有RNAase抑制剂处理过；而DNA相应的则需要DNAase抑制剂处理所用的缓冲

根据你扩增的产物情况选择合适分辨率的凝胶浓度,比如：如果你的条带离引物二聚体很远,且比较单一,那可用1%~1.5%的胶即可,可稍微制厚一点,方便点样；如果你的条带只有一两百即离引物二聚体很紧或者非目标

凝胶层析的固定相是惰性的珠状凝胶颗粒,凝胶颗粒的内部具有立体网状结构,形成很多孔穴.当含有不同分子大小的组分的样品进入凝胶层析柱后,各个组分就向固定相的孔穴内扩散,组分的扩散程度取决于孔穴的大小和组分

聚丙烯酰胺凝胶电泳,普遍用于分离蛋白质及较小分子的核酸.琼脂糖凝胶孔径较大适用于分离同工酶及其亚型,大分子核酸等应用较广.琼脂糖和聚丙烯酰胺可以制成各种形状、大小和孔隙度.琼脂糖凝胶分离DNA度大小范

做蛋白电泳应该用聚丙烯酰胺凝胶电泳吧

不一样,两者有一部分成份是相同的,如指示剂溴酚蓝,和增加比重的蔗糖.对于SDS－PAGE的缓冲液,它还含有一定比例的SDS和强还原剂（巯基乙醇或者DTT）,因为SDS－PAGE中蛋白与SDS结合变性是

我想楼主是不是想问浓缩胶的浓缩原理?不连续系统的凝胶包括浓缩胶和分离胶.浓缩胶的孔径大,分离胶的孔径小.在电场的作用下,蛋白质颗粒在大孔胶中泳动时遇到的阻力小,移动快.而在小孔胶中泳动时遇到的阻力大,

两种方法原理不同,有差异是正常的.如果差距较大,要仔细分析.一般凝胶层析是非变性的,SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳是变性的,二硫键也被还原,所以是亚基（肽链）分子量.凝胶层析与分子形状有关,一般marke

琼脂糖凝胶电泳marker是用来做参考的,类似于标尺的作用.marker会跑出很多条带,对应带的片段长度是一定的（不同的marker,不同,可以查询）；通过找到与样品平齐的带,可以间接地判定样品的片段

加样缓冲液中有buffer染料,给核酸染色,指示作用,电泳缓冲液与制胶缓冲液是一样的,是1*TAE或5*TBE.

可能是梳子不齐,或者是胶边上和中部的厚度不一样!

没看见附图,染料和条带当然会向正极移动.检查你的电源是否反插了,还有就是你重配下tae缓冲液.再问：电极没有反插，DNA向正极移动。核算染料本来是应该均匀的分散在胶体中，可是发现核酸染料会随着电泳时间

如果你的凝胶槽很小可以放进去电泳槽里,当然不取出来啦,免得胶跑歪了.

可能性太多了.1.你跑胶一般都要放MARKER或者叫DNALADDER吧,这个MARKER除外对DNA标记大小以外,还可以用来监控ELECTROPHORESIS的质量,如果MARKER显示而DNA没显