在DNA的提取过程中,沉淀DNA时用异丙醇好还是用乙醇好
来源:学生作业帮助网 编辑:作业帮 时间:2024/05/20 11:59:49
从未听说2mol/L的NaCl溶液可以保持DNA稳定,只是说DNA在这个盐浓度下溶解度最大,可以除去一些杂质,但不能防止DNA降解.大分子DNA主要是由于过长,容易断裂形成小片段.所以在提取的时候操作
非本人原创,转载自网络.认真看.质粒提取需要注意的提到了.溶液I,50mM葡萄糖/25mMTris-Cl/10mMEDTA,pH8.0;溶液II,0.2NNaOH/1%SDS;溶液III,3M醋酸钾/
首先加入溶液1,:改变细胞膜的通透性.加入溶液2:使细胞裂解,释放出质粒DNA和染色体DNA,在碱性条件下,破坏碱基配对,使这两种DNA都变性.加入溶液3:使DNA分子复性.此时,线状染色体DNA的两
第一次离心是去除组织破碎的残渣,DNA位于上清液.第二次离心是氯仿异戊醇抽提,去除蛋白,DNA位于上清液.第三次是高盐低温醇溶液析出DNA,DNA位于沉淀中.
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制备鸡血细胞液沉淀后去上清——放入清水中吸水涨破——过滤去细胞碎片留虑液——加2MOL/LNaCl——使DNA析出——过滤去滤液——2mol/LNaCl再溶解——过滤去多余DNA——加体积分数95%冷
一般我们做DNA提取时,是用鸡血细胞进行提取.用鸡血细胞的原因是,鸟类的红细胞在成熟的时候还具有DNA;哺乳动物的红细胞在成熟的时候DNA就没有了.所以,要用鸡血细胞.做法是把鸡血细胞液5-10ml放
一般氯仿异戊醇都是室温就可以了,你提取的什么组织呢?再问:我取的是丁香叶片有点老现在提取不出来怎么办?提取出来的都是跟果冻似的东西,有极少有白色絮状沉淀,但是跑电泳根本没有东西,有絮状的电泳显示是RN
可我提取的时候好像是用95%的乙醇沉淀的,而后再用70%的乙醇洗涤.1.为什么用无水乙醇沉淀DNA?用无水乙醇沉淀DNA,这是实验中最常用的沉淀DNA的方法.乙醇的优点是可以任意比和水相混溶,乙醇与核
DNA不溶于95%的酒精溶液,但是细胞中的某些物质则可以溶于酒精溶液.利用这一原理,可以进一步提取出含杂质较少的DNA.这里,用酒精可以洗脱在前几步实验中使DNA携带的盐离子
核酸不溶于乙醇,所以可以使用乙醇对核酸进行漂洗,使残留的杂质溶解于乙醇,并最终通过离心去除.可总结为去除DNA中的残留杂质(对混杂的RNA无效).
A.DNA中的嘌呤核苷酸中的脱氧核糖遇酸生成ω-羟基-γ-酮基戊醛,在沸水浴条件下,它和二苯胺试剂反应使溶液呈蓝色,因此,二苯胺可以作为鉴定DNA的试剂.B再问:菜鸟一个完全不懂请解释答案再答:这个就
三代一共产生了8条DNA分子,一条是不含3H的,7条含有.这是因为合成DNA所用的核苷酸都是标记了的核苷酸,也就是说所有新合成的DNA都会有放射性同位素,只有原来的从生物体内提取的不是,所以是8-1=
其实提取细菌基因组DNA并不是要用到上面提到的所有试剂.TE是用来浮起细菌的.如果是阳性菌的话最好是用溶菌酶处理一下.SDS可以让细胞裂解,并与核蛋白结合(当然也包括DNA).蛋白酶K自然是降解蛋白的
YouhavetothinkaboutthesolubilityofDNAinwaterandethanol.ThesurfaceofDNAishighlychargedandasaresultapo
我们实验室提取DNA和RNA时,由于DNA降解少,研磨充分的话得虑还是可以的,但植物含很多糖,很粘绸.RNA容易降解,因此在研磨前一定要加充足的抑制Rna酶的裂解液,同时提取过程防止外源RNA酶引入
如果能看到白色沉淀的话应该是在异丙醇或乙醇沉淀后离心就能看见,而不是加入70%酒精洗涤时才看见,我说的没错吧?如果您是用1.5mlEP管进行的小量DNA提取的话,理应在管底看见非常少的白色沉淀,如果白
marker能看到吗?marker很清楚,电泳就没问题.说明没有DNA.可能提取失败,沉淀也许是盐.测测浓度吧,应该很低.看看提取程序是不是有问题.
DNA浓度很低吧,沉淀多不一定DNA纯度就高,有可能蛋白质也很多,提DNA的过程中蛋白质有过多残留.跑电泳不知道你的buffer那条线有没有,如果也没有的话也许就是电泳的操作过程中出现问题了.
以东盛生物的为例bufferP1:除去RNAbufferP2:裂解细胞bufferP3:沉淀DNAbufferWA、bufferWB:都是洗涤液(这两个之间有什么区别我也不清楚)TE:溶解DNA.