商品化g250考马斯亮蓝溶液

来源:学生作业帮助网 编辑:作业帮 时间:2024/05/11 20:12:08
考马斯亮蓝测定蛋白质用考马斯亮蓝法测定蛋白质含量时,测定出的6个A值大小不一,不成线性.实验过程中,所配制溶液均严格按照

首先所有使用玻璃器皿都要洗干净.1、考马斯亮蓝应在乙醇、磷酸介质中尽量溶解充分.然后过滤定容摇匀.2、用固定的2个比色杯做标准空白比色杯固定,每次测完后用乙醇将测定A值的比色杯洗干净.我测定的r值在0

豆芽中的蛋白质含量用考马斯蓝G-250测定的原理和方法?

考马斯亮蓝G250具有红色和蓝色两种色调.在酸性溶液中,其以游离态存在呈棕红色;当它与蛋白质通过疏水作用结合后变为蓝色.它染色灵敏度高,反应速度快,约在2分钟左右时间达到平衡,在室温一小时内稳定.在0

急:考马斯亮蓝G-250测植物蛋白含量

应为不知道你的标准曲线Y的单位,如果是以加入的标准品的质量做出的曲线,同时没有什么稀释过程的话,你就直接算好了:Y=0.0044*68.790+0.0245=0.327176(单位),总蛋白量=0.3

SDS-聚丙烯酰胺聚胶电泳--通过考马斯亮蓝(CBB)染色

是电泳结束后,把分离胶切下来放在平皿里,用考马斯亮蓝染液(0.05%)染色过夜,之后换脱色液(醋酸:乙醇:水1:4:5)泡一段时间就能看到清晰的条带了~

用考马斯亮蓝G-250法测定蛋白质的含量时,应注意哪些问题?

蛋白质所测的OD值一定要位于标准曲线范围内,因为G-250的曲线随着蛋白浓度增高有些略微偏离线性,若蛋白质浓度太高,可适当稀释后再测.此外,用于标准样品的牛血清白蛋白组分V最好现配现用,已经配好的溶液

考马斯亮蓝染色时间过长会有什么影响

染太久后背景太重,不容易脱色,也就不容易看到条带

考马斯亮蓝测蛋白时 考马斯亮蓝主要与蛋白质中的碱性氨基酸结合 那么考马斯亮蓝会与游离的碱性氨基酸结合吗

会的.不仅碱性氨基酸,去垢剂,如SDS,还有高浓度的缓冲液都会有影响.而且由于蛋白质酸性,碱性氨基酸含量不同,即使蛋白质浓度相同,所测出的值也会不同.

考马斯亮蓝G-250测定可溶性蛋白质 用什么作参比? 谢谢!11

可溶性蛋白质含量的测定——考马斯亮蓝法一、原理考马斯亮蓝G-250测定蛋白质含量属于染料结合法的一种.考马斯亮蓝G-250在游离状态下呈红色,最大光吸收在488nm;当它与蛋白质结合后变为青色,蛋白质

考马斯亮蓝G与考马斯亮蓝G-250是一个东西么?我要测蛋白质含量,用考马斯亮蓝G可以么?

将100mg考马斯亮蓝G-250溶于50m195%乙醇,加入100ml浓磷酸,然后,用蒸馏水补充至200ml,此染液放4℃至少6个月保持稳定.—————————————————————————————

请问:考马斯亮蓝比色法测蛋白含量 是怎样的过程.换算公式呢?

考马斯亮蓝G-250(CoomassiebrilliantblueG-250)测定蛋白质含量属于染料结合法的一种.考马斯亮蓝G-250在游离状态下呈红色,最大光吸收在488nm;当它与蛋白质结合后变为

比较紫外吸收法,双缩脲法,Folin酚法,考马斯亮蓝G250法测定蛋白质含量优缺点

Folin酚法最好,准确度最高;双缩脲法最差,准确度最低;现很少用;考马斯亮蓝G250法介于两者之间.

考马斯亮蓝G250法测定蛋白质含量时,如何避免测定中出现误差,避免样品的OD值低于空白对照的情况发生.

考马斯亮蓝测定蛋白质浓度是较常用的方法,误差可尽量减到最小,需注意:测定OD值前,将分光光度计提前预热至少30分钟,可保证准确性;配制好的考马斯亮蓝溶液应放于4度保存备用;盐离子不会影响实验结果,但去

如何提高考马斯亮蓝染色法的准确性

降低染色液浓度,缩短染色时间.考染太过,会使得所有蛋白质表面都包着厚厚的一层染料,无法定量.只有降低染色液浓度,缩短染色时间才能使得染色回到线性区域,让染料强度和蛋白质浓度成正比.

考马斯亮蓝测定蛋白的标准曲线绘制

1.分光光度计预热下会准些2.是否调0\100,3.用紫外的试试看楼主可曾换一台分光光度计试试,有些仪器时间长了不准的

westernblot电泳后,为什么要考马斯亮蓝染色,直接转膜不行吗?谢谢!

WB的胶用考马斯亮蓝染色,有为了确定你的目的条带电泳情况目的,还有一个目的,就是跟用丽春红染摸一样的作用,看转膜的效率.也就是看你的目的条带是否都转移到你的膜上了.这步染色完全可以省略,一般都可以用预

用紫外分光光度计测蛋白,是用考马斯亮蓝G250吧蛋白染色,我用牛血清白蛋白测标准曲线为什么一直线性很差

我做过这个,R=0.9986,测蛋白就是用这个方法.你可以找国标嘛,步骤都很详细.

【求助/交流】考马斯亮蓝溶液可以长时间存放么?

不可以的会变质的那就是隔段时间测样品蛋白含量的时候,必须重新作标曲了再测了?qwk123(站内联系TA):D;):(杨丹8918(站内联系TA):tiger13:王会征(站内联系TA)没问题啊,我放半

考马斯亮蓝测定蛋白质浓度

是液体就好测了呀把样品取出1ml,按照做标准曲线时一样的处理,再测OD值就行了

SDS-PAGE蛋白电泳固定液问题:电泳结束割胶后,有人直接考马斯亮蓝染色,也有人用固定液固定后再染色.

不用固定,染色液中乙酸就有固定的作用,染色液配方:甲醇:水:乙酸=4.5:4.5:1或5:4:1再问:请问,AC固定是起什么作用的?谢谢。。。再问:请问,AC固定是起什么作用的?谢谢。。。