凝胶电泳

你给的信息的确很少了.楼上2位都分析的很好,不过,我补充说一下露姬雅关于质粒三条带的解释.现在对于3条带的解释是这样的：最前面跑最快的是超螺旋,质粒是超螺旋的,你电泳的时候最亮很正常；中间的是开环质粒

变性了有利于去除蛋白的非特异性吧,

你是应化几班的,学号是多少?我出这道题的目的就是让你们查阅文献资料,考察你们总结的能力,把这道题放在最后大家可以讨论尽量完善,你怎么可以在百度上面直接提问然后作答呢.

最大的不同是聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）用的蛋白质不做任何变性处理SDS-PAGE中的SDS是十二烷基磺酸钠,是蛋白质变性剂,SDS能拆散蛋白质的折叠结构,然后沿伸展的多肽链的表面吸附.使肽链带净负

聚丙烯酰胺凝胶电泳是以聚丙烯酰胺凝胶作为支持介质的电泳方法.在这种支持介质上可根据被分离物质分子大小和分子电荷多少来分离.聚丙烯酰胺凝胶有以下优点：①聚丙烯酰胺凝胶是由丙烯酰胺和N,N'甲叉双丙烯酰胺

RNA跟DNA不一样,主要现象就是降解1.提取过程中RNA出现降解2.洗脱的时候洗掉了3.18S有部分降解4.弥散带说明降解严重,杂质过多5.28S部分降解RNA完美提出来的话应该是三条带：28,18

RNA分子有很多二级结构,需经变性剂处理,而DNA一般不需要变性处理RNA电泳的电泳槽及缓冲液均需要确保无RNAase,有RNAase抑制剂处理过；而DNA相应的则需要DNAase抑制剂处理所用的缓冲

根据你扩增的产物情况选择合适分辨率的凝胶浓度,比如：如果你的条带离引物二聚体很远,且比较单一,那可用1%~1.5%的胶即可,可稍微制厚一点,方便点样；如果你的条带只有一两百即离引物二聚体很紧或者非目标

看你的目的.如果你只是检测目标蛋白大小的话,加上蛋白质marker,考染观察条带大小即可.你要是想知道蛋白质的氨基酸序列的话就去打质谱.话说蛋白质的质谱就是序列分析.

所有用同一方法构建的不同形状的树在拓扑上都是相同的.你用treeview换一个显示形式就能看见你要的那种“不规则分叉”的树了（实际上,你要的是无根树）

实验步骤：凝胶的制备：1、清洗干净两块玻璃板,晾干后按要求装配好垂直电泳板,两块玻璃板的两侧及底部用1%的琼脂糖封边,防止封闭不严而使聚丙烯酰胺液漏出.2、将装好的玻璃电泳板倾斜成45～60℃角.把玻

需要用变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,一般是加入SDS,有多条肽链的蛋白质由于变性彼此分离,又因为不同的分子量在凝胶的迁移速度不同,因此形成不同的条带.

有两个可能,胶没混匀,或者是APS不是新配的,建议用新配APS溶液试试.再问：谢谢你的回答，我胶应该混匀了，几次了不会每次都没混匀啊。APS是新配的啊。我想请问，你感觉是应该整个溶液都一起凝，还是我这

信息不是很详细哦,是PCR产物跑的电泳吗?目标条带是多大呢?从你这个图可以看出你的Marker有点小,没有覆盖到目标条带的大小.再问：扩增之前的。。只是看纯度怎么分析再答：从图上看感觉纯度还行吧，听说

分离不同荷电量、不同分子量的物质,而使其固定在凝胶中而不是丢失在溶液中.可以调节凝胶浓度而调节网孔大小,以适应你的目标物质的分子量.一般可用于蛋白核酸等两性大分子物质分离分析.

我们经常做这个,是比较基础的东西,你的问题叙述的不是很明确,蛋白多大,用的什么MARKER,跑胶时间,电压,胶浓度是多少都没有交代,而且也没有胶图,仅提几点建议:1.看你的问题,应该是胶浓度太低了,所

如果Marker也没有出带,说明电泳及染色有问题,如电泳缓冲液的配制,胶的制备,染色方法等.如果Marker出带而目的片段没有,说明没有目的片段,应该是前期实验的原因.或跑出胶外,说明片段太小,或电泳

聚丙烯酰胺有分子筛效应和电泳效应,而SDS不具有再答：电泳效应

琼脂糖凝胶电泳marker是用来做参考的,类似于标尺的作用.marker会跑出很多条带,对应带的片段长度是一定的（不同的marker,不同,可以查询）；通过找到与样品平齐的带,可以间接地判定样品的片段

可能性太多了.1.你跑胶一般都要放MARKER或者叫DNALADDER吧,这个MARKER除外对DNA标记大小以外,还可以用来监控ELECTROPHORESIS的质量,如果MARKER显示而DNA没显