纤维蛋白平板法的原理

就是培养基倒在平皿里后得到的培养基

两种不同的方法目的不一样.稀释涂布法：优点：可以计数,可以观察菌落特征.缺点：吸收量较少,较麻烦,平板不干燥效果不好,容易蔓延.一般用于平板培养基的回收率计数!平板划线法：优点：可以观察菌落特征,对混

哺乳类的血液具有凝血机制,血小板破裂时,会将血浆中原本可水溶的血纤维蛋白和血细胞等凝固成为血饼,剩余的透明液体就叫做血清.

1应该是电池负极放出电子到一块极板,电池正极将另一块极板上的电子吸了过去.2此时电路是通路电容的充放电过程,你这么理解是对的.3这个问题,要看你这个电路对电容充放电的时间周期.如果高于交流电的周期,那

平板分离一般是指稀释平板分离,平板是指装有用琼脂作为凝固剂的固体培养基,培养基表面非常平滑.将你要分离的样品（如土壤）用无菌水,或无菌生理盐水悬浮,分散,制成悬浊液,然后稀释到一定浓度（具体稀释多少倍

血清确实指的是你所描述的血清,这里不多说了.血清中含有抗体,抗体在血液凝固后是游离在血清中的.你说的蛇毒血清,其实就是含有抗蛇毒抗体的血清.

L型棒,或者叫L型涂布棒.有一次性的,也可以用接种环相同材料的丝自己制作.

稀释操作：1、将分别盛有9ml水的6支试管灭菌,并按10^1到10^6的顺序进行编号.2、用移液试管吸取1ml培养的菌夜,注入10^1倍稀释的试管中.用手指轻压移夜管上的橡皮,吹吸三次,使菌液与水充分

接种针每次划线都会造成菌体分布更为稀疏,最终达到单菌落.

将菌液进行一系列的梯度稀释,然后将不同稀释程度的菌液分别涂布到固体培养基的表面,进行培养,以形成标准菌落

血小板不是血细胞,血细胞包括白,红细胞.白细胞吞噬细菌等感染病菌.红细胞运送氧气排出二氧化碳.最大的区别是血浆内含有前纤维蛋白原,血清没有.

1、划线看你划的好不好了,如果划得恰到好处且均匀,是会有单菌落的,但如果没划好,细菌重叠在一起,就很可能无法形成单菌落了.2、这种方法是可以出去杂菌的,如果平板划得好,你想得到的细菌和杂菌会分别形成单

其目的是一样的：1、防止杂菌掉落（最关键）2、水气是往上蒸发的,可以减慢其干燥速度.

涂布之后整个平板是均匀的,划线之后是不均匀的,只有划线的地方有.涂布的前提是你有菌液才能涂布,划线的前提是你有菌落才行.涂布的优点是简单,均匀,缺点是如果菌液密度大的话,长不出单菌落.划线就是麻烦点,

稀释倒平板法是将细菌与液态的培养基混合后倒入培养皿再冷却凝固,所以细菌在培养基的内部和表面都有,适合厌氧型微生物涂布平板法是将菌种均匀地涂布在培养

这是利用等厚干涉来检测工件的平整度，同一干涉条纹对应着相同的空气膜的厚度，故称为等厚干涉。在同条纹下的薄膜厚度相同，如果平板平整，则距交线相等距离处的薄膜厚度相同，表现在干涉条纹上就是直线；如果某处有

试验常用中英文所写对照表enumerationblatecountmethod缩写eabmh汉译英翻译为Dullcolonynotation

两种方法基本相同,无菌操作也一样,不同的是先分别吸取0.5mol10^(-4)、10^(-5)、10^(-6)稀释度的土壤悬液对号放入平皿,然后再倒入溶化后冷却到45℃左右的培养基,边倒入边摇匀,使样

对峙培养法呢,就是将分离物溶解于有机试剂（如甲醇、丙酮）中内制成一定浓度药液．用微量注射器滴加在直径8毫米滤纸圆片上（用打孔器就可以了）,制成具有一定剂量的药片（如果药量不够,就等药液干了过后再滴加,

测细菌的细胞数目,将待测样品与等量的已知含量的红细胞(M1)混合匀后,涂在载玻片上,经固定染色后,在显微镜下随机选取若干个视野进行计数.得出细菌与细胞的比例n2:m2.再根据红细胞的含量计算出单位体积