琼脂糖凝胶电泳跑不出条带

你给的信息的确很少了.楼上2位都分析的很好,不过,我补充说一下露姬雅关于质粒三条带的解释.现在对于3条带的解释是这样的：最前面跑最快的是超螺旋,质粒是超螺旋的,你电泳的时候最亮很正常；中间的是开环质粒

当然不一定,比如说你的目的基因的copynumber高或者PCR的效率高都会使得beta-actin的条带不如目的基因的条带亮

电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而

不一定要取要取5µl,10µl,15µlDNA,你提取的应该是基因组DNA,主要看条带的位置判断你提取的DNA是否完整,从图上看出,与Marker比较,你提取的基因组DN

RNA跟DNA不一样,主要现象就是降解1.提取过程中RNA出现降解2.洗脱的时候洗掉了3.18S有部分降解4.弥散带说明降解严重,杂质过多5.28S部分降解RNA完美提出来的话应该是三条带：28,18

RNA分子有很多二级结构,需经变性剂处理,而DNA一般不需要变性处理RNA电泳的电泳槽及缓冲液均需要确保无RNAase,有RNAase抑制剂处理过；而DNA相应的则需要DNAase抑制剂处理所用的缓冲

首先,点样孔很亮,说明样品有蛋白污染,其次,条带出现笑脸,有拖尾,是电压过高所致,建议减小电压,一般用90V电压跑,您可以试一下,如果还是出现拖尾可以将电泳槽放在冰上跑.至于胶浓度,您可以搜索一下,根

根据你扩增的产物情况选择合适分辨率的凝胶浓度,比如：如果你的条带离引物二聚体很远,且比较单一,那可用1%~1.5%的胶即可,可稍微制厚一点,方便点样；如果你的条带只有一两百即离引物二聚体很紧或者非目标

几个月没问题电泳槽里就不行了,没几天水分会挥发的,而且使用次数多了缓冲能力也会下降,隔几天就换或者往里再添加点新鲜的吧

就是没有提出来,你可以用紫外风光光度计测一下你所提治理的260,看看有没有东西就知道了.

你的成相也太不清楚了,所以能发张清楚的图吗?还有你要分析什么啊?做的是什么?再问：就只有这两张图啊。至于做的就是“DNA琼脂糖电泳实验”啊，只是材料是自己提取的花菜的DNA和RNA。分析的话当然是推测

这是根据的DNA的浓度决定的,你的DNA的浓度大的话,你可以少上一点,DNA的浓度小的话,你可以多上一点,一般我们上3-5微升就可以,就能检测到了,你要是照胶需要图片的话,你可以先少上点,看看情况,再

点完样再加缓冲液,样品会被冲出来,另外不加缓冲液就拔梳子,孔道容易变形,不规则,

琼脂糖凝胶电泳marker是用来做参考的,类似于标尺的作用.marker会跑出很多条带,对应带的片段长度是一定的（不同的marker,不同,可以查询）；通过找到与样品平齐的带,可以间接地判定样品的片段

发个照片看看.

“从头拖到尾,另外一对引物就能做出来”说明不是引物之间形成二聚体,而是第一对引物的设计有问题（特异性很差）.如果一定要扩增那个区,建议引物的位置向两边放一放.如果你没有好的设计软件,建议到Primer

那要看你的目的基因具体的来源,大小级别的特性.TAE和别的缓冲液什么的,也有些影响,还有就是胶浓度,跑胶时候的电压控制什么的.

可能原因：1.取样不够2.操作过程中机械损伤3.缓冲液加量不够4.凝胶未完全融化

可能性太多了.1.你跑胶一般都要放MARKER或者叫DNALADDER吧,这个MARKER除外对DNA标记大小以外,还可以用来监控ELECTROPHORESIS的质量,如果MARKER显示而DNA没显

greenview没用过,只用过EB.我不在甲醛胶里加EB,好像那样背景比较高.我都是在变性RNA时在RNA loading buffer里加EB,胶上没什么背景.你先试一下看看吧