在PCR反应中,如何设置对照实验

标准的PCR反应体系：10×扩增缓冲液10ul4种dNTP混合物各200umol/L引物各10～100pmol模板DNA0.2ugTaqDNA聚合酶2.5uMg2+1.5mmol/L加双或三蒸水至10

PCR技术已经在生物学研究和临床医学检验领域中得到了广泛的应用,PCR技术也日臻完善.PCR技术操作简便,特异性强,敏感度极高,正因为敏感度高,很容易受其他因素的影响,因此要得到准确可靠的反应结果,需

那要看你做的那种PCR了,如果是为了检测某种DNA或者RNA的话,那你的空白对照,就是在那个空白对照的体系里不加入底物就好了

我认为你这样设置是不妥的,连接器是用来模拟铰接、滑动连接副等的,很少听到用它来模拟接触面.直接设置interactionproperty,就是第二个图标,选择contact,里面选择力学,再换下就可以

聚合酶链式反应

C4单元格公式：=lookup($B4,{0,50},{4.5,4.0})或者：=IF(B4

你的一对引物的TM值最好不要超过3℃,退火温度的一般比TM值低5℃,太低的退火温度会导致非特异性的扩增反应参数可以设为：94℃2m94℃30s｝50℃30s｝30cycles72℃30s｝4℃∞若是无

既然把DNA叫做污染,那应该是对RNA反转录后进行Real-time了.你用未进行反转录的RNA作为模板,跑一次检测Real-time.如果没有DNA污染,这次RT是不会得到扩增结果的,因为RNA不能

将你要上标的字选定,然后点击“格式”,选择“字体”点击,出现一个对话框,在“效果”选项里面有“上标”和“下标”,你自己选!

是反转录PCR么?如果是realtime的话应该可以确定是否到平台期吧?以参考文献来回答也是可以的.关键你要明白对方为什么问这件事.如果没有任何迹象表明你的实验结果不能很好支持你的结论的话,是不应该吸

建议先写个一一对应的表,用VLOOKUP,再多条件也可.再问：VLOOKUP怎么调用，照你所说啊，我建立一个价格表，里面有很多条件，如何调用这些条件呢再答：发个样表来QQ306212368再问：还在线

不知道你说的是PCR循环中的延伸还是循环结束后的终延伸.循环中的延伸步骤实际上是让taq聚合酶开始合成DNA,taq聚合酶是高温活性酶,在72度的时候合成DNA.如果是循环结束后的5～10分钟终延伸,

一、可以使用oligo6或者primer5等软件设计.用这些软件选择引物,主要就是看引物的稳定性,形成二聚体的可能性,退火温度等等参数.二、如果你的序列同源性不高,GC含量也还可以的话,可以使用一些经

先用几个循环把退火温度降下来然后再固定那个温度跑20个循环呗再问：你这是降落PCR吧？再答：是要不同的管子放一起做梯度？循环数和普通的一样啊

选中作一单元格,先写=然后点表格中有数字的某一单元格,再写(加,减,乘,除)任一个,再一个有数值的单元格,再点回车

quantificationcycle量化周期quantificationcyclevariance量化周期方差

工具——选项——文件属性——单位——自定义就可以修改设置单位了

循环中的延伸步骤实际上是让taq聚合酶开始合成DNA,taq聚合酶是高温活性酶,在72度的时候合成DNA.如果是循环结束后的5～10分钟终延伸,它的作用实际上是起到一个补偿作用,有时候你循环过程中的延

这个比较简单,其实你买Taq中就有反应体系,其实这个体系都是公司的人大量实验做出来的,我们实验室现在用Takra的Taq酶,体系就按说明书加的,不过体系是50ul的,我们把所有都减半做了25ul体系就

从两条引物Tm看,退火温度大致在52~57℃左右.在这个范围内做下温度梯度.标准PCR体系就可以.ps：引物有些偏长.